Micropartículas antropogénicas en el bacalao esmeralda Trematomus bernacchii (Nototheniidae) de la Antártida

Jul 23, 2023

Scientific Reports volumen 12, Número de artículo: 17214 (2022) Citar este artículo

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Se encontraron micropartículas antropogénicas (AM) por primera vez en especímenes de Trematomus bernacchii recolectados en 1998 en el Mar de Ross (Antártida) y almacenados en el Banco de Especímenes Ambientales Antárticos. La mayoría de los AM identificados eran fibras de origen natural y sintético. Los MA naturales fueron celulósicos, los sintéticos fueron poliéster, polipropileno, polipropileno/poliéster y acetato de celulosa. La presencia de colorantes en los AM naturales indica su origen antropogénico. Se identificaron cinco tintes industriales por espectroscopía Raman y el índigo se presentó en la mayoría de ellos (55%). Nuestra investigación no solo agrega más datos al conocimiento actual de los niveles de contaminación en el ecosistema antártico, sino que proporciona una instantánea interesante del pasado, destacando que la contaminación por microplásticos y fibras antropogénicas ya había ingresado a la red alimentaria marina antártica a fines del '90. s. Por lo tanto, estos hallazgos establecen las bases para comprender los cambios en la contaminación de los desechos marinos a lo largo del tiempo.

En el último medio siglo, uno de los cambios más ubicuos y duraderos en la superficie de los océanos de nuestro planeta es la acumulación y fragmentación de plástico1. Los microplásticos (MP) son partículas de plástico de menos de 5 mm, fabricadas como partículas pequeñas u originadas a partir de la fragmentación de artículos de plástico más grandes2. La contaminación por MP está muy extendida en todo el mundo y en los ecosistemas oceánicos globales, desde los trópicos hasta los polos, incluido el Océano Austral3,4. A pesar de su presencia omnipresente, hay relativamente pocos informes de MP en las regiones polares y particularmente en el Océano Austral5.

El continente antártico y las aguas circundantes se han visto afectados por la actividad humana durante aproximadamente dos siglos6. En la mayor parte del continente los efectos de las actividades científicas, la pesca y el turismo resultaron en diferentes tipos de contaminación, incluida la contaminación por plásticos7. Además, los hábitats terrestres y marinos adyacentes a las bases científicas antárticas actuales o abandonadas se ven afectados por la contaminación localizada8.

Los informes más antiguos sobre la presencia de basura plástica en aguas antárticas y aves datan de la década de los 809,10. Los primeros registros de ingestión de MP por aves marinas fueron del Océano Austral, cuando los priones Pachyptila spp. que contenían plástico en 196011. Estudios posteriores llevados a cabo después de veinte años en el hielo marino (2009) han destacado la presencia de 14 polímeros diferentes, principalmente polietileno (PE), polipropileno (PP) y poliamida (PA)12 (Tabla 1 ). Algunos estudios, realizados entre 2010 y 2017, reportaron la presencia de polímeros plásticos también en agua de mar y sedimentos, como se resume en la Tabla 1.

Estudios recientes mostraron que el krill antártico puede llevar a cabo una fragmentación biológica de microesferas de poliestireno (PS) en nanoplásticos (NP, < 1 µm)13,14 y esto puede estar relacionado con la propagación de MP y NP en los ecosistemas marinos y la posible repercusión en Cadenas alimentarias antárticas15.

Los bivalvos y los gasterópodos mostraron la mayor contaminación de MP entre los invertebrados bentónicos antárticos, comparable a los valores informados para otras áreas menos remotas16. La ingestión de MP también se destacó en los anfípodos pelágicos que viven en aguas superficiales antárticas17 (Tabla 2).

Artículos recientes informaron la presencia de MP (PE, PP, PA, politetrafluoroetileno (PFTE), poliacrilonitrilo (PAN) y nailon) en excrementos de varias especies de pingüinos, incluidos Pygoscelis papua, P. adeliae, P. antarcticus y Aptenodytes patagonicus18, 19,20.

El área al sur de la latitud 60 S está regida por el Sistema del Tratado Antártico (ATS) y, en materia ambiental, por el Protocolo al Tratado Antártico sobre Protección del Medio Ambiente, que entró en vigor en 1991. Este protocolo contiene anexos específicos sobre Eliminación de Residuos y Gestión de Residuos (Anexo III), y sobre Prevención de la Contaminación Marina (Anexo IV). Además, el área antártica es considerada como un “Área Especial”, y bajo la Convención IMO-MARPOL para la Prevención de la Contaminación por Buques21; De acuerdo con el Anexo V, se prohíbe la liberación deliberada de desechos plásticos de los barcos (como cuerdas de plástico, redes de pesca y bolsas de plástico) y otros desechos. Debido a la creciente evidencia de contaminación plástica en la Antártida, el Comité Científico de Investigación Antártica (SCAR) diseñó recientemente un grupo de acción sobre la contaminación plástica en el Océano Austral22 y, en 2019, el Sistema del Tratado Antártico adoptó la resolución "Reducción de la contaminación plástica en Antártida y el Océano Austral". Este documento recomienda eliminar los productos plásticos para el cuidado personal, identificar e intercambiar información para reducir la liberación de MP de los sistemas de aguas residuales, apoyar el monitoreo de la contaminación plástica en la Antártida y, finalmente, insertar el tema de MP en los Anexos III y IV del Protocolo sobre Protección Ambiental al Tratado Antártico.

A pesar de los importantes esfuerzos para monitorear y evaluar los niveles de contaminación plástica alrededor de la Antártida, el alcance, la cantidad y los impactos de los MP en el medio ambiente marino de esta área especial siguen siendo en gran parte desconocidos. Los estudios sobre el estado de la contaminación marina en el continente antártico en los albores de este fenómeno son escasos, por lo que sería crucial arrojar luz sobre su origen y cambios a lo largo de las décadas. Muy recientemente, un estudio sobre la nieve antártica reveló la presencia de contaminación por microplásticos vinculada al trabajo de investigadores de la Estación Antártica Mc Murdo23.

El bacalao esmeralda Trematomus bernacchii (Boulenger, 1902), también conocido como notothen esmeralda, es una especie de pez marino perteneciente a la familia Nototheniidae, y es un teleósteo muy común en las aguas someras de la Zona Alta Antártica24. Es nativo del Océano Austral donde es una especie comercialmente importante25. T. bernacchii vive en aguas muy poco profundas hasta los 700 m de profundidad y está adaptado a vivir a temperaturas extremadamente bajas. Es un alimentador generalizado con un amplio nicho compuesto casi exclusivamente por organismos bénticos (principalmente poliquetos infaunales y epifaunales, anfípodos y moluscos) y pequeños peces. T. bernacchii puede considerarse un alimentador oportunista ya que cambia sus hábitos alimenticios habituales para explotar diferentes recursos alimentarios estacionalmente abundantes (zooplancton)26. Los nototenioides, como T. bernacchii, juegan un papel clave en la red alimenticia de la Alta Antártida del Mar de Ross y representan el vínculo entre los niveles tróficos superior e inferior que contribuyen a la dinámica y la estabilidad del sistema marino27.

En este trabajo se investigó la presencia y composición de micropartículas antropogénicas (en adelante AMs) en el bacalao esmeralda, con el objetivo de evaluar si este tipo de contaminación ya existía hace muchas décadas. Esto fue posible porque los especímenes de T. bernacchii han sido recolectados sistemáticamente desde finales de los 90 en el contexto de las actividades del Banco de Especímenes Ambientales Antárticos28 (BCAA) y el Museo Nacional Antártico Italiano (MNA), y luego almacenados adecuadamente para preservar su integridad. Por lo tanto, los especímenes de T. bernacchii recolectados en el entorno costero antártico de la bahía de Terra Nova (Mar de Ross, Antártida) en 1998 (las muestras disponibles más antiguas almacenadas en el BCAA) proporcionaron una instantánea interesante de la contaminación por MP en ese momento. En este estudio se ha utilizado la espectroscopia micro-Raman para identificar la composición química de las micropartículas ya que se encuentra entre las técnicas más poderosas para detectar e identificar micropartículas marinas y aditivos químicos antropogénicos asociados, así como para diferenciar entre partículas naturales y sintéticas29 ,30,31.

El estudio involucró a ocho especímenes adultos de T. bernacchii; la longitud varió de 215 a 275 mm y el peso de 165 a 319 g (Cuadro 3). Seis muestras dieron positivo para AM (75 %), se detectaron un total de 37 partículas (rango de tamaño de 0,4 a 4,2 mm) en los GIT, principalmente pertenecientes a AM grandes (63 %; rango de tamaño de 1,1 a 4,2 mm) y AM pequeñas ( 37%; rango de tamaño de 0,4 a 0,9 mm).

De ellos, 35 (95%) fueron fibras y 2 (5%) fragmentos. No se encontraron bolitas de plástico, espumas o esferas. Las partículas azules fueron las más abundantes (32 %), seguidas de las blancas/transparentes (27 %), negras (24 %), rojas (8 %), verdes (3 %), violetas (3 %) y amarillas (3 %). (Figura 1).

Conjunto seleccionado de micropartículas antropogénicas (AM) aisladas del tracto gastrointestinal (TGI) de muestras de Trematomus bernacchii capturadas en 1998 en la Antártida (Bahía Terra Nova, Mar de Ross) y proporcionadas por el Banco de especímenes ambientales antárticos. Los MA se han identificado analizando los espectros medidos mediante espectroscopia micro-Raman (paneles A.1, B.1, C.1, D.1), tras la adquisición de imágenes con un estereomicroscopio óptico (4x, Leica M205C; paneles A. 2, B.2, C.2, D.2, relación de escala para el panel B.2 y D.2 como en el panel A.2) y un microscopio confocal Raman (50\(\times\), Olympus BX41; paneles (A.3, B.3, C.3, D.3), relación de escala para todos los paneles indicados en el panel (A.3) El aumento de 50 × nos permite apreciar: la fibra de poliéster en varilla rígida (B .3); la textura del tejido de algodón (C.3); las cintas planas y ligeramente retorcidas de fibras celulósicas (D.3). Paneles inferiores: Distribución porcentaje de color (%) (panel E), composición (panel F ) y tipo de colorante (panel G), para todos los AM identificados ingeridos por Trematomus bernacchii.

Las micropartículas identificadas (n = 20; 57%) fueron de origen natural y sintético, sobre la base de los AM identificados, el valor de abundancia fue igual a 3,3 ítems/espécimen; mientras que quince micropartículas no se identificaron porque la fluorescencia eclipsó su señal Raman.

El hallazgo de MA en los GIT de T. bernacchii puede estar relacionado con sus hábitos de alimentación y su fuerte relación con el fondo marino, como también se sugiere para otros peces bentónicos32,33,34. Varios estudios en el Mar Mediterráneo han encontrado fibras no plásticas, principalmente a base de celulosa, en diferentes especies bentívoras35,36. Los AM pueden ingerirse accidentalmente durante la actividad de alimentación o por ingestión secundaria. T. bernacchii es un depredador generalizado37 con una amplia gama de elementos dietéticos26 y también puede considerarse como un alimentador oportunista, que realiza migraciones verticales ocasionales para alimentarse de presas planctónicas abundantes local y estacionalmente26. A la luz de esto, T. bernacchii también puede ingerir los AM a lo largo de la columna de agua.

Dado que este estudio es la primera investigación realizada sobre especies de peces antárticos, solo pudimos hacer comparaciones con estudios recientes sobre agua de mar, sedimentos y organismos bentónicos de la misma área de estudio.

Las microfibras fueron las micropartículas más frecuentes en los sedimentos cercanos a la estación italiana "Mario Zucchelli" (MZS)38 y en las aguas cercanas a la planta de tratamiento de aguas residuales de la MZS39, así como en pingüinos de otras áreas antárticas18,20.

Los peces pueden actuar como una fuente indirecta de contaminación por microfibras para los depredadores marinos, como las focas40 y los pingüinos de las áreas subantárticas19 (21,9 artículos/g de heces).

Las micropartículas de origen natural identificadas fueron celulósicas (n = 14; 70%). Uno de los fragmentos mostraba la textura típica de la tela (ver Fig. 1, panel C.3). El algodón fue el rubro más abundante (45%) seguido de la celulosa (18%). Se ha encontrado que la mayoría de las microfibras celulósicas están teñidas, lo que confirma su origen manufacturado (antropogénico).

Entre todas las microfibras examinadas, el tinte industrial se identificó mediante espectroscopia Raman en 11 elementos: Indigo, Cromophtal Violet B, Drimaren Navy Bue R-2RL, Vine black dye y Sirius light green, con Indigo presente en la mayoría de ellos (55 %). . Los espectros Raman de elementos identificados seleccionados se muestran en la Fig. 1.

De acuerdo con nuestros resultados, la mayoría de las fibras (~ 88%) encontradas en los excrementos de los pingüinos rey de Georgia del Sur estaban hechas de materiales celulósicos naturales (algodón, lino), con solo unas pocas fibras sintéticas19 (PES, PP y acrílico).

Los textiles son la principal fuente ambiental de microfibras41,42. Los textiles sintéticos son responsables de la descarga de alrededor de 0,5 millones de toneladas de MP al mar cada año43.

Las fibras de celulosa sintéticas asociadas a colorantes o aditivos podrían ser potencialmente dañinas para los organismos marinos35,44,45, de hecho los colorantes industriales se utilizan en la industria con varios polímeros como las fibras de celulosa. En particular, el índigo se usa para teñir fibras celulósicas de blue jeans, la prenda más popular del mundo46. Recientemente se ha documentado la presencia de microfibras teñidas con índigo en los ecosistemas marinos47. Las microfibras "blue jeans" se han propuesto como un indicador de la carga generalizada de contaminación antropogénica desde las regiones templadas hasta las árticas48. Además, los tintes textiles, son muy tóxicos y están relacionados con la degradación ambiental49.

Los tintes textiles pueden comprometer la calidad estética de los cuerpos de agua, aumentar la demanda bioquímica y química de oxígeno (DBO y DQO), alterar la fotosíntesis y reducir el crecimiento de las plantas43. Los tintes textiles pueden ingresar a la cadena alimenticia43, bioacumularse, biomagnificarse50, promover toxicidad, mutagenicidad y carcinogenicidad 51,52,53,54.

En su revisión muy reciente en 202255, Athey y Erdle sugirieron que la abundancia de microfibras naturales y semisintéticas en la biota marina puede estar subestimada55. Enumeran diferentes causas posibles para esta subevaluación, los métodos utilizados para aislar microfibras están diseñados para la recuperación e identificación de materiales sintéticos. Algunos productos químicos, utilizados para aislar microfibras sintéticas, pueden provocar la degradación de las fibras no sintéticas; varios estudios excluyen las micropartículas naturales y semisintéticas de sus análisis4 con el supuesto de que las fibras no plásticas son fácilmente biodegradables o no peligrosas para la biota marina56. Athey y Erdle también señalan que, aunque las fibras naturales pueden degradarse más rápido que los polímeros sintéticos, estas fibras pueden persistir en el medio ambiente marino durante décadas en relación con la naturaleza de la fibra y los factores ambientales55. Además, la degradación de las fibras naturales y semisintéticas implica la liberación de tóxicos adsorbidos en la superficie al medio ambiente56. Los tintes textiles industriales también pueden prolongar la persistencia de las microfibras en el medio ambiente55. Sugerimos que se debe prestar más atención a la detección experimental de tintes en fibras naturales, ya que los tintes son indicadores de procesamiento antropogénico y posibles causas de daño biológico. El efecto de las microfibras naturales y semisintéticas en la biota marina está poco estudiado y merece especial atención, especialmente por parte de la comunidad de investigación polar.

Las micropartículas sintéticas reportadas en este estudio fueron poliéster (PES; 3), polipropileno (PP; 1), polipropileno/poliéster (1) y acetato de celulosa (1) (Fig. 1).

PES y PP también fueron los principales polímeros encontrados en el agua de mar junto a la planta de tratamiento de aguas residuales en MZS39. También se ha encontrado PP en sedimentos del Mar de Ross38, así como en agua de mar, sedimentos y hielo marino en otras áreas antárticas (Tabla 1). De acuerdo con nuestros datos, uno de los polímeros más comunes en los pingüinos de la Península Antártica y la región del Mar de Scotia fue el PP20 (Tabla 2). Los peces pueden actuar como fuente indirecta de contaminación por microplásticos cuando son presa de otros organismos. Los principales riesgos están vinculados no solo a la propagación de MP a lo largo de la cadena alimentaria que llega al ser humano, sino sobre todo a la liberación de peligrosos xenobióticos adheridos a las MP57.

Actualmente 76 estaciones de investigación científica están ubicadas por debajo de los 60° S pertenecientes a 29 naciones; El 31% son estaciones permanentes mientras que el 69% de las estaciones están activas solo durante el verano.

Las plantas de tratamiento de aguas residuales están presentes solo en la mitad de las estaciones de investigación (48%). Este es el caso del MZS, que está abierto desde mediados de octubre hasta mediados de febrero. Sin embargo, el tratamiento convencional de aguas residuales, incluidas las técnicas de tratamiento terciario, puede eliminar alrededor del 90 % de los MP58, y esta situación puede exacerbarse en áreas remotas donde las dificultades operativas pueden reducir la eficiencia del tratamiento59. Los MP no retenidos pueden liberarse en un estado mayormente inalterado, en el entorno marino cercano a la costa después de haber pasado por las instalaciones. Del mismo modo, los tintes textiles no se eliminan fácilmente mediante procesos convencionales de tratamiento de aguas residuales debido a sus propiedades intrínsecas60 (es decir, estabilidad y resistencia a la luz oa los agentes oxidantes). Según un estudio muy reciente sobre la nieve caída en la Antártida, la contaminación por microplásticos y fibras antropogénicas puede estar relacionada con las estaciones de investigación antárticas y tener su origen en la ropa y los equipos polares23.

Este documento proporciona una instantánea del pasado sobre la ingestión de AM por parte de especímenes de bacalao esmeralda recolectados hace 24 años, lo que representa la primera evidencia de este fenómeno en un pez antártico.

Además, este hallazgo será útil para comparar el nivel de contaminación pasado con la situación actual, mediante el análisis del tracto gastrointestinal de Trematomus bernacchii capturado durante la última prospección antártica (expedición XXXVII – 2021/2022). Esta comparación permitirá comprender los cambios en la contaminación por basura marina a lo largo del tiempo, especialmente en el ecosistema antártico, con sus peculiares características ambientales y su fragilidad, digno de ser protegido y preservado.

Este estudio enfatiza aún más la importancia del monitoreo de micropartículas antropogénicas y tintes textiles en la Antártida y, con suerte, ayudará a las medidas de política actuales sobre contaminación plástica bajo el Tratado Antártico para mejorar la vigilancia y promover acciones de mitigación. En el futuro, es muy deseable una red de conexión para recuperar muestras más antiguas en el seguimiento de los cambios de contaminación a lo largo del tiempo.

El área de estudio se ubicó en Gerlache Inlet (74° 41′ S; 164° 6′ E), una ensenada de 7 km de ancho en la esquina noroeste de Terra Nova Bay (Ross Sea), un área marina costera que abarca 29,4 km2 entre Cape Washington y la lengua de hielo Drygalski (Fig. 2).

Área de estudio (Bahía de Terranova, Mar de Ross). El mapa se elaboró ​​con Google Earth (https://earth.google.com/web/@74.6953791,164.0961781,0.4171455a,2467.23579724d,30.00002056y,0h,0t,0r) en el que se indicaron los sitios de muestreo y descarga de la planta de tratamiento de aguas residuales .

Este sitio es un área litoral importante para investigaciones científicas a largo plazo, y ha sido propuesto como Zona Antártica Especialmente Protegida (ZAEP) por Italia en 2003. Los muestreos se llevaron a cabo en febrero de 1998 en dos sitios: B5 (74° 41 ′ 60′′ S, 164° 07′ 00′′ E) y B806 (74° 43′ 025'' S, 164° 08′ 648'' E). B5 y B806 están a 3,8 y 7 km del emisario de aguas residuales, respectivamente (Fig. 2). Los especímenes fueron capturados con trasmallo, inmediatamente congelados, enviados a Italia al final de la expedición y finalmente almacenados en el Banco de Especímenes Ambientales Antárticos. Las muestras se mantuvieron a -20 °C desde el muestreo hasta el análisis, realizado en junio de 2021.

Cada espécimen se descongeló lentamente a 4 °C durante la noche y luego se extrajeron los GIT, desde el esófago hasta el final del intestino, y se almacenaron en una placa de Petri de vidrio. Cada GIT, fue pesado y bajo campana microbiológica, colocado en matraz cónico de vidrio y tratado con solución de K-OH al 10%, en proporción 1:5 (p/v). El matraz se agitó a 50 °C durante 48 h. Luego, cada muestra se colocó en un cilindro de vidrio agregando una solución hipersalina de NaCl al 15% para obtener la separación por densidad de las dos fases. El sobrenadante se recogió en un vaso de precipitados y se filtró a través de filtros de fibra de vidrio (1,6 μm Whatman GF/F, Reino Unido) utilizando un sistema de vacío (Millipore). Después de los procedimientos de filtración, las membranas se colocaron en placas de vidrio Petri estériles para su posterior observación bajo el microscopio estereoscópico (Leica M205C) para aislar los residuos plásticos61. Todas las partículas fueron identificadas visualmente, contadas, medidas y fotografiadas. Todos los elementos se clasificaron en función de su tamaño (micropartículas pequeñas: 0,1–1 mm; micropartículas grandes: 1–5 mm; meso: 5–25 mm; macro: > 25 mm), forma (pellet, fibra, espuma, fragmento , lámina y esfera) y color según el protocolo de la Directiva Marco de Estrategia Marina62.

Los elementos antropogénicos encontrados en los GIT se expresaron como número de AM identificados por especímenes. Todos los elementos aislados de cada espécimen de pescado se analizaron para la caracterización.

Para evitar la contaminación del aire durante los análisis de laboratorio, los espacios de trabajo y las herramientas se limpiaron rigurosamente de cualquier contaminación por partículas, siguiendo un protocolo exitoso63, las muestras se procesaron en una sala con acceso restringido, para evitar cualquier contaminación externa accidental, y todas las operaciones se realizaron bajo un control microbiológico. capucha. Todos los materiales utilizados para la disección, los pasos de extracción y análisis se limpiaron a fondo con etanol y agua desionizada filtrada. Se utilizó material de vidrio y todos los instrumentos y equipos (incluyendo pinzas y tijeras) se enjuagaron a fondo con agua ultrapura. Además, los operadores usaban abrigos de algodón. Los vasos de precipitados se cubrieron con papel de aluminio entre cada paso para evitar la contaminación del aire. Los blancos de procedimiento también se corrieron al mismo tiempo para evitar la sobreestimación de fibras, los filtros húmedos en placas de Petri se colocaron debajo de la campana microbiológica y se expusieron al aire del laboratorio cerca del estereomicroscopio64. Los blancos de procedimiento sin tejido también se analizaron al mismo tiempo que las muestras. Se realizó un blanco de procedimiento cada dos muestras. Las muestras en blanco de procedimiento estaban libres de cualquier contaminación AM.

Todas las partículas aisladas de los GIT se evaluaron mediante microespectroscopia Raman. Un análisis preliminar de los resultados de Raman tuvo como objetivo identificar y agrupar los espectros similares. Posteriormente, se logró la identificación molecular del componente de los AMs comparando los espectros Raman con los disponibles en bibliotecas.

Se utilizó espectroscopía Micro-Raman para identificar las composiciones poliméricas de los MA. Se rechazaron las fibras que presentaban ramificación o cambio de espesor a lo largo de su longitud, siendo ambas características evidencias de un origen biológico (fibras radiculares o vegetales).

Los espectros Raman de microfibras y partículas se tomaron en una geometría de retrodispersión en un sistema Raman microconfocal HR Evolution (Horiba Scientific) utilizando un láser de diodo emisor de luz verde (λ = 532 nm), un × 100 (NA = 0,90 ) o un objetivo × 50 (NA = 0,45), una rejilla de 1800 g/mm y un detector de dispositivo de par cargado refrigerado a 77 K. Para evitar la fotodegradación de la muestra, la potencia del láser se mantuvo por debajo de 5 mW utilizando un filtro de transmisión de porcentaje más bajo. Los espectros se recolectaron en el rango de 200 a 4000 cm-1, mientras que la duración de la exposición al láser y el número de acumulaciones de espectro variaron en el rango de 5 a 20 s y de 2 a 20, respectivamente, según el tinte específico en el MP. . El análisis se realizó en diferentes puntos en el mismo MP para confirmar la identificación. Para eliminar la interferencia de fondo debida a la fluorescencia, los datos de las muestras fluorescentes se corrigieron mediante la rutina de corrección plana del LabSpec6. Además, además de la corrección FLAT, se aplicó la corrección de la línea de base antes del análisis espectral. Los espectros se identificaron comparándolos con los de los materiales estándar catalogados en las bases de datos espectrales de Bio-Rad KnowItAll Spectral Library y Spectral Library of Plastic Particles (SLoPP y SLoPP-E). Un valor del Índice de calidad de aciertos (HQI) del 80 % o más se ha aceptado como matemática verdadera.

Los autores declaran que han obtenido permiso para el uso de muestras de peces antárticos con fines de investigación del Museo Nacional Antártico Italiano (MNA) y del Banco de Muestras Ambientales Antárticas (BCAA) de Génova.

Los conjuntos de datos utilizados y/o analizados durante el estudio actual están disponibles del autor correspondiente a pedido razonable.

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Los autores desean agradecer al Museo Nacional Antártico Italiano (MNA) y al Banco de Especímenes Ambientales Antárticos (BCAA) de Génova (Italia) por haber proporcionado amablemente los especímenes de Trematomus bernacchii utilizados en este estudio.

Instituto de Recursos Biológicos Marinos y Biotecnología (IRBIM) – CNR, Messina, Italia

Teresa Bottari, Serena Savoca, Nunziacarla Spanò y Monique Mancuso

Departamento de Ecología Marina Integrativa (EMI), Stazione Zoologica Anton Dohrn - Instituto Nacional de Biología, Ecología y Biotecnología Marina, Centro Marino de Sicilia, Messina, Italia

Teresa Bottari, Teresa Romeo y Monique Mancuso

Departamento de Ciencias Matemáticas y Computacionales, Ciencias Físicas y Ciencias de la Tierra, Universidad de Messina, Messina, Italia

Valeria Conti Nibali, Caterina Branca y Giovanna D'Angelo

Departamento de Química y Química Industrial (DCCI), Universidad de Génova, Génova, Italia

Marco Grotti

Departamento de Imágenes Biomédicas, Dentales y Morfológicas y Funcionales, Universidad de Messina, Messina, Italia

Serena Savoca y Nunziacarla Spano

Instituto para la Protección e Investigación Ambiental (ISPRA), Milazzo, ME, Italia

teresa romeo

Instituto de Ciencias Polares (ISP) – CNR, Messina, Italia

Mauricio Azzaro

Departamento de Infraestructuras de Investigación para Recursos Biológicos Marinos (RIMAR), Stazione Zoologica Anton Dohrn, Instituto Nacional de Biología, Ecología y Biotecnología Marina, Centro de Investigaciones e Infraestructuras Marinas Avanzadas de Calabria (CRIMAC), Amendolara, CS, Italia

Silvestre el griego

Instituto de Procesos Químico-Físicos, Consejo Nacional de Investigación de Italia (IPCF-CNR), Messina, Italia

Juana D'Angelo

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TB contribuyó escribiendo el borrador original, revisando y supervisando. VCN contribuyó realizando el análisis formal, seleccionando datos y escribiendo. CB, MG, SS, TR, NS, MA y SG contribuyeron con la revisión y edición. GD contribuyó a hacer el análisis formal, la curación de datos y redacción, la supervisión. MM contribuyó con la administración del proyecto, conceptualización, análisis formal, redacción y supervisión. Todos los autores dieron su aprobación para la publicación del contenido y contribuyeron con la redacción del trabajo y la revisión crítica del manuscrito.

Correspondencia a Giovanna D'Angelo o Monique Mancuso.

Los autores declaran no tener conflictos de intereses.

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Reimpresiones y permisos

Bottari, T., Nibali, VC, Branca, C. et al. Micropartículas antropogénicas en el bacalao esmeralda Trematomus bernacchii (Nototheniidae) de la Antártida. Informe científico 12, 17214 (2022). https://doi.org/10.1038/s41598-022-21670-x

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Recibido: 04 julio 2022

Aceptado: 29 de septiembre de 2022

Publicado: 14 de octubre de 2022

DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-022-21670-x

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